Ти тут

Переливання крові - практичні навички педіатра

Зміст
Практичні навички педіатра
антропометричні вимірювання
Ступінь статевого дозрівання
Схема оцінки фізичного розвитку дитини
Фізикальні методи дослідження дитини
Ошупиваніе
вистукування
вислуховування
генеалогічний метод
Експрес-методи виявлення спадкових біохімічних дефектів
Цитогенетичні методи дослідження
дерматогліфіка
Навички по догляду за хворою дитиною
Промивання шлунка, клізми
Навички по догляду, вигодовування і лікування новонароджених
Вигодовування доношеної новонародженого
Навички з виходжування недоношених дітей
Методика виведення новонародженого з асфіксії
Гемолітична хвороба новонароджених і техніка замінного переливання крові
Техніка взяття матеріалу для лабораторних досліджень
Техніка введення лікарських речовин і рідин
Введення лікарських засобів через рот, пряму кишку
інгаляції
Парентеральне введення лікарських речовин і рідин
Техніка застосування ванн
Місцеві відволікаючі процедури
методи теплолікування
Світлолікування і светопрофілактіка
Ультрафіолетове опромінення (УФО)
Методи дослідження нервової системи
Методи дослідження вегетативної нервової системи
Інструментальні методи дослідження нервової системи
Функціональні методи дослідження органів дихання
Дослідження газів крові
Функціональні дослідження з використанням фармакологічних проб
Функціональні методи дослідження серцево-судинної системи
Фонокардіографія, реографія
Реоенцефалографія, контрастна ехокардіографія, полікардіографія, кардіоінтервалографії
Вимірювання артеріального тиску
Клінічні функціональні проби серцево-судинної системи
Визначення загальної фізичної працездатності
лікарські проби
Методи дослідження органів травлення
дуоденальне зондування
Дослідження функцій підшлункової залози
дослідження випорожнень
Методи дослідження функції печінки
Дослідження екскреторної і знешкоджуючих функції печінки
Радіоізотопне дослідження і УЗД печінки
Рентгенологічні методи дослідження жовчних шляхів
Методи дослідження нирок та органів сечовиділення
Визначення білка в сечі
Дослідження сечового осаду
Функціональне дослідження нирок
Методи визначення парціальної функції нефрона
Спеціальні методи дослідження нирок
Маніпуляції - сечостатева система
Методи дослідження системи крові
дослідження лейкоцитів
Дослідження кісткового мозку
Дослідження лімфатичних вузлів
Дослідження системи гемостазу
Переливання крові
Методи дослідження обміну речовин
Методи дослідження КОС
Методи дослідження обміну білків
Дослідження вуглеводного обміну
Дослідження ліпідного обміну
Методи пункції і катетеризації вен
Санація трахеобронхіального дерева
СДПД
техніка реанімації
Методи визначення імунологічної реактивності
Визначення специфічної реактивності
Методи дослідження шкірних покривів і слизових оболонок
додатки

Відео: Лейкоцити

ЗАГАЛЬНІ ПОЛОЖЕННЯ

Переливання крові може бути ефективним методом лікування тільки за умови трансфузии сумісної в антигенному відношенні крові.
Правила переливання крові у дітей ті ж, що і у дорослих. Перед кожним переливанням крові необхідно: 1) встановити групу крові донора і реціпіента- 2) визначити резус-приналежність крові реціпіента- 3) поставити пробу на групову сумісність крові донора і реціпіента- 4) поставити пробу на резус-сумісність крові донора і реціпіента- 5 ) провести біологічну пробу.

ТЕХНІКА ВИЗНАЧЕННЯ ГРУПИ КРОВІ

Групова приналежність крові визначається за допомогою стандартних сироваток. В основі визначення лежить реакція ізогемагглютінаціі, т. Е. Реакція аглютинації еритроцитів випробуваного з відомої сироваткою, що містить антитіла. Сироватки регулярно отримують в регіонарних станціях переливання крові та відповідних науково-дослідних лабораторіях.
Після маркування тарілки [вказати прізвище хворого, групи крові: 0 (1), А (П), В (III)] в квадрати відповідно написам вносять по великій краплі стандартної сироватки двох серій кожної групи в два ряди і біля кожної краплі сироватки кінцем скляної палички - маленьку краплю випробуваної крові. Завдані краплі змішують паличкою або кутом предметного скла. Спостереження ведуть 5 хв. Тарілку періодично повільно похитують. На 4-й хвилині до кожної краплі, де наступила аглютинація, додають краплю фізіологічного розчину. Через 5 хвилин відзначають результат. За наявністю або відсутністю аглютинації роблять висновок про групову приналежність (табл. 46).
Табл. 46. Оцінка результатів визначення груп крові за допомогою
стандартних сироваток

При появі аглютинації у всіх сироватках необхідно перевірити кров з сироваткою 0 (IV) для виключення неспецифічної аглютинації.
У сумнівних випадках можна вдатися до визначення групи крові за допомогою стандартних еритроцитів. При цьому досліджується сироватка хворого. Групова приналежність досліджуваної крові встановлюється також за наявністю або відсутністю аглютинації (табл. 47).
Табл. 47. Оцінка результатів визначення груп крові за допомогою
стандартних еритроцитів

ТЕХНІКА ВИЗНАЧЕННЯ резус-ПРИЛАДДЯ
Для визначення резус-приналежності в крові виявляється наявність або відсутність антигенів резус з антирезусної сироваткою. Є три різновиди антигену резус: Rh0 (D) gt; rh `(C) і rh"(E). Найбільше практичне значення має антиген Rho (D), ось чому під терміном «резус-фактор» зазвичай мають на увазі цей антиген.
При визначенні резус-фактора необхідно враховувати групову специфічність антирезус за системою АВО. Сироваткою антирезус групи 0 (1) крові визначають резус-фактор в еритроцитах групи 0 (1), сироваткою антирезус групи А (П) -в еритроцитах груп 0 (1) і А (П), сироваткою антирезус групи В (III) -в еритроцитах груп 0 (1) і B (III), сироваткою антирезус групи AB (IV) - в еритроцитах групи AB (1V) і будь-який інший групи крові.
Існує кілька методів визначення резус приналежності крові. Вибір методу залежить від властивостей стандартної сироватки антирезус. У клінічній практиці широко поширений метод конглютинації в сироваткової середовищі на чашках Петрі.
Для дослідження беруть 1-2 мл крові і використовують звичайні пробірки без стабілізатора. На пробірці пишуть прізвище, ініціали та групу крові хворого. Після згортання крові на дні пробірки залишається невелика кількість еритроцитів, яке досліджується у вигляді 5 10% суспензії у власній сироватці. Суспензія готується на око в тих же пробірках шляхом збовтування вмісту. Таким же способом слід готувати і стандартні еритроцити для контролю.
У чашку Петрі вносять по дві краплі сироватки антирезус в шість точок (три - однієї серії і три - інший). Біля кожної краплі роблять позначку.
До першої краплі кожної серії сироватки додають по краплі суспензії досліджуваних еритроцитів, до другої краплі - контрольні резус-позитивні і до третьої краплі - контрольні резус-негативні еритроцити. Краплі перемішують скляною паличкою і чашку Петрі опускають у водяну баню на 10 хвилин при температурі 46-48 ° С.
Результат оцінюють за наявністю або відсутністю аглютинації еритроцитів над джерелом світла при легкому погойдуванні. При позитивному результаті агглютінати легко помітні на майже безбарвному тлі рідини, при негативному - крапля залишається рівномірно забарвленою в червоний колір. Зразки еритроцитів, що дали аглютинацію з сироваткою антирезус Rh0 (D), є резус-позитивними (Rh +), а не дали аглютинації - резус-негативними (Rh ~). Результат слід вважати істинним при збігу показників в обох серіях сироваток антирезус і після перевірки контрольних зразків, які підтверджують специфічність і активність сироватки антирезус, тобто. Е. За відсутності аглютинації зі стандартними резус-негативними еритроцитами однойменної групи або групи 0 (1).
Останнім часом все частіше використовується визначення резус-приналежності за допомогою універсального реагенту антирезус в пробірці без підігріву.
Для визначення резус-фактора може бути використана свіжа несвернувшаяся кров, взята з пальця безпосередньо перед дослідженням, або консервована без будь-якої попередньої обробки, а також еритроцити з пробірки після утворення згустку і відсмоктування сироватки.
На дно пробірки вноситься крапля стандартного реагенту антирезус і крапля досліджуваної крові (або еритроцитів). Вміст пробірки перемішують струшуванням і повільно повертають, нахиляючи пробірку майже горизонтально так, щоб вміст розтікався по її стінках. Це робить реакцію більш вираженою. Як правило, аглютинація настає протягом хвилини, але для утворення стійкого комплексу антиген - антитіло спостереження слід проводити не менше 3 хв. Для виключення неспецифічної агрегації еритроцитів в пробірку додають 2-3 мл ізотонічного розчину натрію хлориду і перемішують (НЕ збовтуючи) шляхом 2-3-разового перевертання пробірки. Наявність аглютинації у вигляді великих пластівців з еритроцитів на тлі освітленої рідини вказує на резус-позитивну приналежність досліджуваної крові, відсутність аглютинації - на резус-негативну.

ТЕХНІКА ВИЗНАЧЕННЯ ГРУПОВОЇ СУМІСНОСТІ
КРОВІ донора і реципієнта

Групова сумісність визначається перед кожним переливанням крові за загальноприйнятою методикою. Для цього береться 1-3 мл крові реципієнта. Після згортання кров центрифугируется, сироватка відсмоктується.
До двох краплях сироватки реципієнта додаються в 5-10 разів менші краплі крові (еритроцитів) донора, і проба перемішується. Спостереження проводиться при погойдуванні тарілки протягом 5 хвилин в умовах кімнатної температури. Для виключення помилкової аглютинації необхідно додати краплю фізіологічного розчину натрію хлориду і продовжити спостереження ще 2 хв. У сумнівних випадках результати враховуються під мікроскопом при малому збільшенні. Кров вважається несумісною при наявності стійкої аглютинації. У разі негативної реакції кров сумісна.

ТЕХНІКА ВИЗНАЧЕННЯ резус-СУМІСНОСТІ
КРОВІ донора і реципієнта



Проба проводиться перед кожним переливанням крові.
На чашку Петрі наносять дві великі краплі сироватки реципієнта і до них додають менші (в 5-10 разів) краплі крові донора. Краплі перемішують і чашку поміщають на водяну баню при температурі 44-46 ° С на 10 хв. Кров вважається сумісною при відсутності аглютинації.
Трансфузія крові можлива лише тоді, коли лікар абсолютно впевнений в тому, що при постановці проби на сумісність не наступила аглютинація.

БІОЛОГІЧНА ПРОБА

Біологічна проба у дітей старшого віку проводиться як у дорослих.
Максимально швидко (бажано струменево) вводять перші 25 мл донорської крові з подальшою зупинкою
трансфузии на 3 хв. Потім повторно вводять таку ж кількість крові і знову роблять паузу на 3 хв. Процедура повторюється тричі. У результаті хворий отримує 75 мл крові. При переливанні крові дітям грудного віку зупинка робиться після введення 2-5 мл крові, дітям до 10 років - після введення 5-10 мл.
Якщо при проведенні біологічної проби відсутні будь-які реактивні явища, то кров визнається сумісною, і переливають її в необхідній дозі і з потрібною швидкістю. У разі несумісності крові у хворого прискорюється пульс, частішає дихання, змінюється забарвлення шкіри, виникають болі в грудях і особливо в попереку, іноді з`являються нудота і блювота.
При проведенні біологічної проби у дітей необхідно враховувати об`єктивні дані. При різкому учащении пульсу, падіння кров`яного тиску, неспокої дитини трансфузию слід негайно припинити.

ТЕХНІКА переливання крові



У клінічній трансфузіології строго диференційовано використовуються компоненти крові, її препарати і синтетичні гемокорректори спрямованого лікувальної дії з гемостатической, дезінтоксикаційної, імунологічної, реологічні та гемодинамічної метою. За сучасними уявленнями, показання до переливання цільної крові повинні бути обмежені. Абсолютним показанням до трансфузії цільної крові є крововтрата більше 12% об`єму циркулюючої крові. Всі інші свідчення вважаються відносними і проводяться з замісної метою. До них відносяться: 1) гемолітична хвороба новонародженого з необхідністю замінити переливання крові-2) важкий стафілококовий сепсис і стафілококова деструкція легень при рівні гемоглобіну нижче 80 г / л-3) недостатність кровотворення (гострий лейкоз, гіпоплазія гемопоезу) при рівні гемоглобіну нижче 60 70 г / л (М Я. Студеникин, І. В. Кошель, 1978).

Найкращий засіб при гемолітичних кризах - еритроцитарна маса. На особливу увагу заслуговує призначення розморожених і багаторазово відмитих еритроцитів.
При сучасних методах заготовки та консервування крові широко поширене непряме переливання її. Пряма трансфузія крові застосовується рідше.

Препарати крові вливаються дітям, як правило, внутрішньовенно. Для цього використовується ліктьова вена, поверхневі вени голови, вени тилу кисті, яремні і ін. При неможливості венопункції проводиться веносекція. Кров вводиться крапельно або при невеликих трансфузіях струменево, частіше за допомогою шприца "Рекорд".
Кількість крові, необхідне для переливання, визначається масою тіла дитини і показаннями.
З замісної метою дітям раннього віку призначають кров з розрахунку 10 мл на 1 кг маси тіла, дітям старшого віку-100-200 мл на вливання. В інших випадках дози можуть збільшуватися.
Еритроцитарної маси дітям до двох років вводять близько 50 мл, в більш старшому віці 50-100 мл. Плазма переливається в дозах, рівних середнім дозам крові.
Техніка непрямого (посереднього) переливання крові. Консервована кров надходить у лікувальні установи в спеціальних ампулах, в м`якій пластичної тарі або у флаконах з гумовими пробками. Для дітей консервована кров заготовлюється у флаконах в малій розфасовці. Флакони з кров`ю повинні зберігатися в холодильниках при температурі 4 ° С. Переливати кров з одного флакона дозволяється тільки одній дитині.
У педіатричній практиці кров зазвичай переливають після того, як вона простоїть протягом 30-50 хвилин при кімнатній температурі. Ослабленим хворим кров рекомендується підігрівати у воді, температура якої поступово підвищується від 20 до 38 ° С. Консервовану кров з флакона переливають з допомогою системи з двома голками (довга і коротка), які служать для проколювання пробки. Довга голка використовується при трансфузии для надходження в флакон повітря.
Для переливання крові застосовується система з трьох гумових трубок довжиною 20, 30 і 10 см. Перші дві трубки з`єднані між собою крапельницею, друга і третя - скляною трубкою довжиною 5 см. Остання трубка служить для спостереження за потоком крові. Верхній вільний кінець системи призначений для з`єднання з короткою голкою флакона. На нижній кінець системи надаватися металева насадка для голки.
Після заповнення стерильною системи кров`ю на трубку поблизу голки накладається затискач. Потім проводиться венопункцій і до голки приєднується насадка системи. Швидкість вливання крові регулюється спеціальним затискачем, який встановлений на трубці, що з`єднує флакон з крапельницею.
Техніка прямого переливання крові. Існує велика кількість апаратів для безпосереднього переливання крові. Найпростіший з них - скляний трійник.
Після стерилізації зібрана система заповнюється 2% розчином натрію цитрату або гепарину (1 мл гепарину на 100 мл сольового розчину). На гумові трубки накладаються затиски. Хворий і донор повинні лежати на двох паралельних столах, між якими встановлюється столик для переливання. На цьому столику з рук донора і хворого робиться пункція вени. З руки хворого знімається джгут, затискач на трубці донора розслабляється, і в шприц набирається донорська кров. Потім затиск на трубці донора здавлюється і знімається затиск з трубки хворого. При тиску на поршень шприца кров вводиться в вену хворого. Потім знову розслабляється затиск на трубці донора і накладається на трубці хворого. Так надходять стільки раз, скільки потрібно перелити крові.  

 

Відео: Медичний центр "Мобільна медицина"



Поділися в соц мережах:

Увага, тільки СЬОГОДНІ!

Схожі повідомлення

Увага, тільки СЬОГОДНІ!