Ти тут

Фарбування тканини за методом ван-гізоном, маллорі - основи гістології

Зміст
основи гістології
Короткий нарис історії гістології
цитологія
клітка
цитоплазма
ядро
життєдіяльність клітини
розподіл клітин
епітеліальна тканина
Сполучна тканина
кров
Ще не зцементована неоформлене сполучна тканина
ретикулярна тканина
Щільна волокниста сполучна тканина
хрящова тканина
Кісткова тканина
М`язова тканина
нервова тканина
Нервові волокна і закінчення
Серцево-судинна система
органи кровотворення
Травна система
залози
шкіра
система виділення
Органи дихання
Нервова система, органи чуття
статева система
Організація робочого місця лаборанта-гістолога
Техніка виготовлення гістологічних препаратів
Взяття і етикетування матеріалу
Завдання і правила фіксації
фіксуючі засоби
Промивання, зневоднення гістологічного матеріалу
Просочування і заливка гістологічного матеріалу
Підготовка тканин для електронно-мікроскопічного дослідження
Мікротоми і робота з ними
Мікротом заморожують, охолоджуючий столик
Догляд за мікротомів, мікротом-кріостат
мікротомних ножі
Ультратом
Приготування зрізів з парафінових блоків
Приготування целлоідінових зрізів
Фарбування і висновок зрізів
Просвітлення і висновок зрізів, висновок в смоли
Висновок в водні середовища
Методи фарбування препаратів
Приготування і фарбування мазка крові для підрахунку лейкоцитарної формули
Фарбування тканини за методом ван-Гізоном, Маллорі
Фарбування сполучної тканини АЗУР еозином
Фарбування еластичних волокон методом Унни-Тенцера, резорцин-фуксином
Виявлення аргірофільних волокон, елементів нервової системи
Імпрегнація за методом Більшовского-Грос
Виявлення нервових елементів методом прижиттєвого фарбування метиленовим синім
Імпрегнація елементів макрогліі
Безин`екціонний метод вивчення судин по В. В. Купріянова
Обробка і фарбування кісткової тканини, декальцинація, фарбування
гістохімічні методи
Виявлення (сумарне) білків
виявлення полісахаридів
Виявлення та ідентифікація кислихмукополісахаридів
Комбіновані гістохімічні методи (для полісахаридів і протеидов)
Фарбування жирів і ліпідів, виявлення заліза
Гистохимія нервової системи
Гистохимія ферментів
Застосування ізотопів в гістології
Приготування пленчатих препаратів
Обробка матеріалу біопсії

Фарбування сполучної і м`язової тканини за методом ван Гізоном

Цей метод має ряд переваг в порівнянні з забарвленням гематоксилін-еозином, так як по-різному забарвлюються різні компоненти тканини. При фарбуванні за методом ван Гізоном вживаються два розчину: а залізний гематоксилін Вейгерта (приготування див. Нижче) і б) замість еозину кислу суміш пикрофуксином. Колагенові волокна сполучної тканини після фарбування пикрофуксином мають яскраво-червоний колір, а м`язові та еластичні волокна - буро-червоний або жовто-зелений. Залізний гематоксилін Вейгерта забарвлює Ядра в темно-коричневий або буро-чорний колір. Можна підфарбовувати ядра і міцним розчином гематоксиліном Бемера (без диференціювання).

робочі розчини

Гематоксилін Вейгерта готують безпосередньо перед фарбуванням, змішуючи рівні об`єми основних розчинів Вейгерта (першого і другого), які зберігають окремо.
Перший розчин Вейгерта: в 100мл 96% спирту розчиняють 1 г гематоксіліна- другий розчин: 4 мл 29% розчину хлориду заліза (3 +) * зливають з 1 мл міцної соляної кислоти і додають 95 мл дистильованої води.

* При відсутності хлориду заліза (3 +) можна користуватися 2-3% розчином железоаммоніевие квасцов.



При змішуванні розчинів доливають другий розчин до першого не в рівному, а в кілька меншій кількості, а потім додають другий розчин до отриманої суміші по краплях з піпетки до рівної кількості з першим розчином.
В силу зміни поверхневого натягу розчину він починає підніматися по стінках посудини (бюкса) і збирається в краплі, які знову стікають в рідину. Таке явище вказує на правильне кількісне співвідношення першого і другого розчинів Вейгерта в суміші, і тоді додавання другого розчину треба припинити. Барвник, якщо він правильно приготований, темно-фіолетового кольору. Якщо він бурого кольору, то є надлишок другого розчину. Ядра таким барвником забарвлюватимуться не в чорний, а в бурий колір.
Розчини Вейгерта окремо можна зберігати роками, їх суміш -не більше 3-4 днів, тому краще всього користуватися свіжим розчином.
Розчин пикрофуксином: до 100мл насиченого водного розчину пікринової кислоти додають 4-10 мл 1% водного розчину кислого фуксину.
Якщо потрібно терміново приготувати дуже невелика кількість розчину, то в пляшечку з-під пеніциліну наливають профільтрований насичений розчин пікринової кислоти (половину бульбашки) і до нього по краплях додають 1% розчин кислого фуксину. При цьому контролем може служити крапля суміші на фільтрувальної папері, яка повинна мати колір свіжої крові.

фарбування

  1. З дистильованої води зрізи перенести в гематоксилин Вейгерта на 2-5 хв. Забарвлення ядер треба контролювати під мікроскопом.
  2. Обполоснути зрізи в дистильованої воді і перенести в водопровідну воду на 10 хв (воду потрібно змінити).
  3. Помістити зрізи на 1-2-3 хв (іноді на Vi хв) в пикрофуксином.
  4. Швидко (5-10с) сполоснути зрізи в дистильованої воді, провести їх дуже швидко через 96% спирт (можна змінити), просветлить в карбол-толуоле, толуолі і укласти в канадський бальзам. Результат: колагенові волокна яскраво-червоного кольору, а м`язові та еластичні - буро-жовтого або жовто-зеленого. Ядра бурокорічневого або буро-чорного кольору.

Особливості забарвлення.



Необхідний постійний контроль під мікроскопом. Якщо ядра набувають бурий, а не чорний колір, то слід довше потримати зрізи в гематоксиліном або менше в пикрофуксином, так як пикрофуксином володіє сильно диференціюються дією відносно гематоксиліном.
Якщо волокна сполучної тканини забарвлюються в інтенсивно червоний колір, то слід після пикрофуксином довше полоскати зрізи в воді, де кислий фуксин розчиняється. Якщо, навпаки, сполучна тканина блідо забарвилася фуксином, необхідно дуже швидко обполоснути зрізи в воді або навіть не обполіскувати зовсім і відразу перенести в спирти.
Якщо виходить слабка забарвлення пікринової кислотою (клітини залоз, гладкі м`язи), то необхідно прискорити проводку зі спиртами, так як вони беруть із препарату пикриновую кислоту. При перефарбування препарату пікринової кислотою необхідно збільшити час перебування зрізу в спиртах.
Істотним недоліком цього методу є вицвітання препаратів, тому їх не можна зберігати тривалий час. Можна використовувати гематоксилин Майера, карацу, Ерліха, але гематоксилин Вейгерта дає кращу забарвлення.

Забарвлення сполучної тканини за методом Маллорі

Фарбуються парафінові і целлоідіновие зрізи.
Метод добре виявляє різні елементи сполучної тканини, особливо колагенові і ретикулярні волокна. Його можна використовувати і для фарбування м`язової та інших тканин.
Матеріал краще фіксувати в сулемового фіксаторах, особливо в суміші Ценкера.
Якщо матеріал зафіксований в формаліні, то перед фарбуванням зрізи слід поміщати в рідину Ценкера на 15-30 хв. Потім на кілька хвилин зрізи занурюють в спиртовий розчин йоду, що дозволяє звільнити зрізи від опадів дихлорида ртуті. Після цього зрізи поміщають в 0,25% розчин тіосульфату натрію (гіпосульфіту), щоб відновити йод.

робочі розчини

Необхідно мати три робочих розчину.
Водний розчин кислого фуксину 0,1%.
Розчин фосфорно-молібденової кислоти 1%.
Суміш, що складається з анілінового синього, оранжевого Г і щавлевої кислоти. Для приготування фарбувальної суміші 0,5 г анілінового синього, 2 г оранжевого Г і 2 г щавлевої кислоти розчиняють в 100 мл дистильованої води. Цю суміш нагрівають до кипіння, охолоджують і фільтрують. Коли складові частини розчиняються, суміш набуває інтенсивно коричневий колір з зеленуватим відтінком. Розчин придатний до вживання відразу після приготування. Після довгого зберігання перед вживанням розчин необхідно прокип`ятити і профільтрувати.

фарбування

  1. Після звільнення від парафіну зрізи з дистильованої води переносять в розчин 0,1% кислого фуксину на 2-3 хв.
  2. Швидко промивають в дистильованої воді 1-2 хв.
  3. Для закріплення, забарвлення кислим фуксином зрізи переносять в 1% розчин фосфорно-молібденової кислоти на 3-5 хв.
  4. Швидко споліскують в дистильованої воді.
  5. Переносять зрізи в свежепрофільтрованную суміш анілінового синього, оранжевого Г і щавлевої кислоти на 1 хв (слід уникати перефарбування).
  6. Промивають зрізи в дистильованої воді.
  7. Диференціюють в 96% спирті 3-5 хв і більше, поки під мікроскопом чи не з`являться пофарбовані в синій колір колагенові волокна.
  8. Проводять через абсолютний спирт, ксилол, укладають в канадський бальзам.

Результат.

Колагенові і ретикулярні волокна темно-синього кольору, слиз - синього, еритроцити - червоно-оранжевого, м`язові волокна - яскраво оранжевого, хроматин - червоного з жовтуватим відтінком, нейроглії і гангліозних клітини - червонувато-фіолетового, секреторний гранули - червоного кольору.



Поділися в соц мережах:

Увага, тільки СЬОГОДНІ!

Схожі повідомлення

Увага, тільки СЬОГОДНІ!